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Medicina del conejo de compañía. Parte III (sexaje, cirugía, fármacos y vacunas)

Por Domingo García. Veterinario JG especialista en pequeños mamíferos.

6.-DETERMINACIÓN DEL SEXO (CARACTERÍSTICAS SEXUALES)

Los gazapos suelen ser mejor identificados de recién nacidos o en el destete (5-8 semanas). En conejos jóvenes entre esas edades es difícil exteriorizar los órganos sexuales. Los conejos machos poseen una abertura genital circular, puntiaguda y prominente mientras que las hembras presentan una abertura pequeña en forma de ranura, elíptica. La distancia ano-genital en los machos es mayor que en las hembras pero de no tener un individuo de cada género al mismo tiempo tal vez sea difícil detectar esta diferencia en gazapos y conejos jóvenes. En machos adultos el pene, cónico o cilíndrico, aparece si se realiza una ligera presión a ambos lados de la abertura genital y los sacos escrotales se localizan lateralmente al periné. Debido a que el canal inguinal en conejos es grande, los testículos pueden retirarse por él haciendo más difícil la identificación.


7.-RECOMENDACIONES QUIRÚRGICAS Y ANESTESIA

ENUCLEACIÓN DEL GLOBO OCULAR.- Podemos hablar de dos técnicas descritas para enuclear el ojo sin cortar el seno venoso orbital mayor. La primera es un abordaje transconjuntival. Se retiran los márgenes de los párpados y disecciona la conjuntiva palpebral de la superficie de los párpados. Después se disecciona la conjuntiva bulbar alrededor del globo, siempre permaneciendo lo más cerca posible del globo ocular evitando así el seno, tras diseccionar todas las estructuras periorbitales colocar una pinza hemostática en el nervio óptico y vasos sanguíneos, retirando el ojo posteriormente. La segunda es un abordaje transpalpebral. Se inicia la disección permaneciendo lo más cerca posible de la pared de la órbita ósea para evitar el seno. Se retiran todas las estructuras de la órbita ósea. Si el seno sangra ha y que colocar pinzas hemostáticas aunque sea a ciegas para poder controlar la hemorragia pues el sangrado es profuso y rápido. Hay que retirar el ojo lo más rápido posible para controlar la hemorragia. Se debe retirar así mismo todo tejido glandular y conjuntival. Suturar los párpados una vez controlada la hemorragia. Normalmente se usa nylon 3-0 o 4-0 sin problemas.

ORQUIDECTOMÍA.- CASTRACIÓN ABIERTA Y CERRADA.-
Para la técnica cerrada se realiza una incisión de 1-1.5 cm a través del escroto de forma longitudinal a cada lado de la línea media. Se sujeta la túnica y se retira el testículo del escroto con la túnica intacta. La túnica está adherida a la parte final del escroto mediante el ligamento propio del testículo, el cual al ser desgarrado permite la exteriorización del testículo. Se aplica tracción caudal al testículo utilizando una gasa para romper las uniones faciales y permitir que la estrecha porción del cordón sea exteriorizada. Tras exteriorizarlo se clampa el contenido del cordón y se liga. El inconveniente es que si la sutura no es suficientemente fuerte, los vasos espermáticos pueden escapar de la ligadura.
La castración abierta cierra el anillo inguinal. En esta técnica abre la túnica vaginal para exteriorizar el testículo, el cordón espermático y el suministro vascular. Doble ligadura alrededor del cordón espermático y retiramos el testículo. Se sigue el pedículo vascular cranealmente y tras identificarlo se colocan puntos sueltos con cuidado de no comprimir los vasos que pasan a través del canal.
Una tercera opción sería castración abierta en la que dejamos la grasa epididimaria intacta al retirar el testículo, así la grasa evita la herniación del intestino a través del anillo inguinal.
No es necesario suturar escroto, se deja por segunda intención o bien se utiliza un patrón intradérmico con material absorbible de 4-0.

OVARIOHISTERECTOMÍA.-
Se realiza una pequeña incisión en línea media (de 2-8 cm según tamaño de la coneja) entre ombligo y borde pelviano. Recordar vaciar la vejiga de la orina antes de realizar la operación pues nos da mayor campo de visión y mayor manejabilidad. Tras identificar el útero doble dorsal a la vejiga y en abdomen caudal se eleva y se aísla primero un ovario, ligando los vasos uterinos con un doble nudo de material sintético absorbible, hay que incluir el cuerno uterino y el infundíbulo. El mesometrio contiene muchos vasos en abanico y es muy friable, al igual que el mesovario y el mesosalpin, sobre todo en animales obesos y son difíciles de identificar por lo que hay que atarlos colocando ligaduras en el mesometrio. Hay que hacer doble ligadura en los grandes vasos laterales al cervis y por separado, después se clampa y ligan los cuernos uterinos lo más cerca posible del cuello. Una alternativa es clampar y ligar la vagina caudal al doble cervis, asegurándonos así que todo el tejido uterino ha sido retirado. Se cierra el muñón vaginal con varias ligaduras para evitar posible fugas de orina a abdomen. Cerramos pared abdominal con absorbible sintético y la piel con absorbible continuos intradérmicos, evitando así dar puntos sueltos externos y tener que colocar collar isabelino para evitar que se muerda los puntos la coneja.

CANALIZACIÓN DEL CONDUCTO LACRIMAL.-
El conducto nasolacrimal tiene su origen en un punctum en el párpado ventral. La utilización de un anestésico ocular nos desensibiliza el ojo sin necesidad de anestesia general. Para visualizar el orificio, mantener el párpado inferior evertido hacia abajo o sujete el margen del párpado y cuidadosamente se lateraliza. El sondaje puede ser muy difícil si hay exceso de secreción y además la zona está muy inflamada.

RECORTE/EXTRACCIÓN DE INCISIVOS PRINCIPALES.-
Se hace imprescindible la realización de una radiografía para comprobar el grado de lesión, desviación y longitud de la raíz. Tras la anestesia se procede a cortar los incisivos dejando entre 5-10 mm de corona. Se extraen primero los dientes curvos ya que son los que se fracturan durante la extracción de los principales incisivos maxilares. Limpiar las encías con antiséptico y colocar un elevador dental (sirve de carnívoros) alrededor de cada diente para separar cuidadosamente los ligamentos periodontales. No hacer palanca en la corona de los dientes ya que se puede fracturar el diente. La marcada curvatura de los principales incisivos hace difícil su elevación. Con una hoja de bisturí del número 11 se separan las uniones gingivales y las periodontales lateral y medial. Con un pequeño elevador dental se aplica una modera presión medialmente hasta conseguir soltar un poco el diente. Sujetando la corona se gira el diente en su alvéolo a lo largo de la línea de erupción. Se puede intentar sacar con unas pinzas a modo de fórceps. Los alvéolos se taponan rápidamente con un coágulo sanguíneo, de necesitar sutura se realizará con absorbible de 4/0. Tras la anestesia se suministrará agua y comida (no blanda), administrar antiinflamatorios de ser necesario.

OSTEOTOMÍA VENTRAL DE LA BULLA: Se palpa la bulla caudal y medial al ramo vertical de la mandíbula. Se incide (4-5cm) en dirección media a la glándula salivar entre el proceso angular de la mandíbula y las alas del atlas. El músculo subcutáneo se incide en el mismo plano que la incisión cutánea. Con incisión roma se disecciona el hipogloso y el estilogloso, evitan el nervio hipogloso (en cara lateral del músculo hipogloso). Se continúa incidiendo dorsalmente hasta llegar a la bulla entre el proceso yugular del cráneo y el proceso angular de la mandíbula. Colocar separador para mantener la exposición. Se incide el periostio a nivel medial (más delgado que pared lateral), dejando siempre libre la zona dorsomedial pues es donde se localizan los huesecillos del oído interno y el promontorio y su lesión provocarían signos vestibulares. Se eliminan detritus y el epitelio que recubre internamente a la bulla y se lava todo. Se deja drenaje para durante 7-10d lavar la bulla y se cierra todo. La antibioterapia es esencial.

8.-USO DE FÁRMACOS

Pauta anestésica en CONEJOS.

Preferible el Isofluorano porque tiene un inicio de acción más rápido y un tiempo de eliminación mayor que el Halotano. Hay que estar muy pendiente durante la inducción con Halotano (en menor medida Isofluorano) pues es normal la aparición de apnea después que dura 1-2 minutos. La apnea da lugar a bradicardia refleja y una ligera hipercapnia e hipoxia. Al mismo tiempo se han liberado gran cantidad de catecolaminas plasmáticas debido a la manipulación y estrés preanestésico por lo que cuando el conejo empiece a inhalar de nuevo se verá expuesto a alta concentración de Halotano (que causa aumento de la sensibilidad del corazón a las catecolaminas) provocando mayor hipercapnia e hipoxia. La administración de preanestésicos no soluciona nada, por lo que es mejor retirar la mascarilla y colocarla de nuevo cuando respire de nuevo.
Los conejos anestesiados con gases reciben un 60-100% de oxígeno como gas portador, causando una elevación marcada de pO2 a pesar de que disminuye la frecuencia respiratoria. Lo anestesiados con sustancias inyectables muestran bajada de la frecuencia respiratoria pero también una caída sustancial de la pO2, esto es debido a un fallo en el aporte de oxígeno a los animales, pues en muchos casos no se aplica oxigenoterapia de apoyo. Proporcionar oxígeno es importante sobre todo si se tiene una enfermedad respiratoria previa. Aunque no se evita la hiercapnia, es importante evitar la hipoxia.
Requiere un tranquilizante previo a la anestesia inhalatoria como la Acepromacina (0,1-0,5 mg/Kg SC). Sin premedicar se necesita una inducción del 3-4% de Isofluorano. El mantenimiento rondará el 0,5-2% según la premedicación.
De forma alternativa: Ketamina + Diazepam o Ketmaina + Xilacina para la inmovilización química y anestesia ligera.
1.-Se puede utilizar como tranquilizante Acepromacina (0,1-1mg/Kg IM) combinado con Ketamina (20-30mg/Kg IM) para aumentar la calidad de la anestesia.
2.-Diazepam (2-10mg/Kg IM) para dar relajación muscular y sedación.
3.-Diazepam (0.5-1mg/Kg IM, IV) 30 minutos antes de administrar Ketamina (10-20mg/Kg IM, IV) se potencia el efecto de ambos, el mantenimiento se realizaría con inhalatorio. Dosis mayores de ambas sustancias ( de no disponer de inhalatoria) no se consiguen planos anestésicos buenos.
4.-Xilacina (2-5mg/Kg IM, SC) combinado con Ketamina (35-50mg/Kg IM) mayor sedación y relajación muscular, pero en contrapartida vasoconstricción periférica, disminución de la presión arterial, frecuencia respiratoria y cardiaca y la temperatura. Por lo que necesitaría de anestesia inhalatoria durante las cirugías para proporcionar planos anestésicos similares. Se ha observado irritación local tras su administración IM, que se subsana administrándolo en varios puntos en inyección.
5.-Ketamina (35-50mg/Kg IM) produce sedación e inmovilización química pero no la relajación muscular ni la analgesia suficiente para la mayoría de procesos quirúrgicos.
6.-No se aconseja el uso de atropina de forma rutinaria para premedicar pues ciertos conejos presentan atropinesterasas y metabolizan la Atropina rápidamente. Siendo el Glicopirrolato el agente anticolinérgico más eficaz en conejo.

Fentanyl/droperidol proporcionan buena analgesia e inmovilización en cirugías menores de conejos. Tras la cirugía, podemos revertir con Butorfanol los efectos secundarios de estos neuroleptoanalgésicos (corregiremos la depresión respiratoria, reducir el grado de sedación y recuperación más rápida) sin quitar la analgesia pues sigue el efecto analgésico sobre los receptores K-opiáceos.

Existen signos fisiológicos y de comportamiento de dolor en el conejo. El dolor agudo está acompañado de secuelas muy características. Generalmente cualquier cambio en el comportamiento o temperamento puede ser signo de dolor o estrés. Conductas de comportamiento específicas:
Incapacidad de dormir
Actividad disminuida
Reticencia al movimiento
Timidez
Depresión
Irritabilidad
Estar tumbado demasiado tiempo en la jaula
Anorexia
Cojera
Rigidez abdominal
Los conejos con dolor abdominal yacen estirados completamente en su jaula. También se han observado casos de posición encorvada y rechinar de dientes. Dos signos importantes a tener en cuenta y vigilar, son la disminución de la ingesta de alimentos y la toma de agua. Los hallazgos fisiológicos que pueden indicar dolor son hiperventilación, taquicardia, fluctuaciones en la presión sanguínea e hiperglicemia.
Aunque no está probado el uso en estas especies, existe un número importante de fármacos eficaces o aptos para el tratamiento de dolor en conejos. Estos son los agonistas opioides, antagonistas-agonistas opioides y los antiinflamatorios no esteroideos. Todos tienen efectos secundarios. Para su aplicación correcta es importante conocer sus propiedades farmacológicas. Los agonistas opioides, morfina (2-5mg/Kg SC, IM) produce una buena analgesia de 2-4h de duración. Los efectos secundarios son sedación y depresión respiratoria. Los antagonistas-agonistas opiáceos (menos efectos secundarios que los agonistas) que pueden ser utilizados en el conejo son la Buprenorfina (0,02-0,05 mg/kg SC, IM), Butorfanol (0,1-0,5 mg/kg IV, SC, IM y considerado inocuo y efectivo incluso cada 4h) y la Nalbufina (1-2mg/Kg IM, IV) los fármacos antiinflamatorios no esteroideos como el Flunixim Meglumine (0,3-1 mg/kg SC, IM) pueden ser útiles para tratar el dolor músculo esquelético leve o moderado o dolor debido a inflamación visceral. Además la forma inyectable del Flunexim Meglumine puede utilizarse de forma oral si se mezcla con un jarabe (glucosado 50%) de alta palatabilidad.
El ácido acetilisalicílico (100mgr/Kg PO cada 4-8h) proporciona un nivel moderado de analgesia en casos de dolor ortopédico. Es importante en cualquier caso mantener una adecuada hidratación y monitorizar al animal por posible irritación gástrica cuando se administran aines.

La mayoría de proceso clínicos observados en conejos mantenidos como mascotas derivan de un mal cuidado por lo que es importante realizar una anamnesis y una historia clínica detallada. A la hora de la exploración nuestra mascota debe estar lo más tranquila posible porque el mínimo estrés provoca taquicardia y taquipnea que nos enmascararían el cuadro patológico subyacente.


AMPICILINA 25mg/Kg diluida al 15% IM, SC sid o bid
15mg/kg PO bid

CEFALORIDINA 15mg/Kg IM bid

CEFALEXINA 15mg/kg SC bid

CLORANFENICOL 15mg/kg IM bid
50mg/Kg PO sid

CLORTETRACICLINA 1g/ml de agua (polvos)

GENTAMICINA 4mg/Kg IM, SC bid

OXITETRACICLINA 115mg/kg IM,SC bid

TERRAMICINA LA Pfizer 30mg/Kg IM, SC cada 3d
1mg/ml en agua o 60mg/Kg y día en varias dosis

SULTAMIDAS POTENCIADAS
como TRIMETOPRIM/SULFADIACINA 48mg/kg SC sid

GRISEOFULVINA 25mg/Kg PO sid o 12,5 bid 28-40d

IVERMECTINA 200-400 micras/Kg PO, SC repetir a los 10d.

PRAZICUANTEL 5-10 mg/Kg PO, SC, IM repetir a los 10d.

FEBENDAZOL 20mg/kg sisd 5d oral

DOXICICLINA 2.5 mg/kg bid PO

ENROFLOXACINA 5-15 mg/kg bid PO, SC, IM

METRONIDAZOL 20 mg/kg bid PO 3-5d

DEXAMETASONA 2-4 mg/Kg SC, IV (en shock)
0.2mg/Kg IM (como antiinflamatorio)

PREDNISOLONA 0.5-2mg/Kg PO, IM, SC

OXITOCINA 1-2 UI IM, SC por conejo adulto

GLUCONATO CALCICO 5-10ml al 10% IV por conejo adulto

FUROSEMIDA 0.3-2mg/Kg bid PO, SC, IM, IV

CISAPRIDA 0.5 mg/Kg sid, bid, tid PO

METROCLOPRAMIDA 0.5 mg/Kg tid SC

LINCOMICINA prohibida pues produce enterotoxemia.

9.-VACUNACIONES

Se recomienda la vacunación de forma anual ( e incluso semestral en algunas de ellas) ante las siguientes enfermedades.
1.-MIXOMATOSIS El riesgo para un conejo que viva siempre en un piso en una gran ciudad es casi inexistente. En cambio, puede ser bastante mayor para uno que viva en las afueras, o en una zona rural, aunque sólo sea durante las vacaciones o fines de semana.
En general sería aconsejable vacunar a todos los conejos contra esta enfermedad. La primera vacuna se puede administrar a partir de los dos meses de edad. La inmunidad dura 6 meses, así que lo ideal sería vacunar dos veces al año. De todos modos, si la vacuna se administra a principios de la primavera, la protección es razonable durante la época de mayor riesgo del año, y puede bastar con una sola dosis de recuerdo anual, administrada al principio de la primavera.
2.-HEMORRAGICA VIRAL El riesgo para un conejo que viva como mascota sólo es significativo si vive en una zona rural y con acceso al aire libre. Tras la vacunación, la resistencia se desarrolla en 1-2 semanas, pero se requiere vacunar cada 6-12 meses según la vacuna usada para mantener la protección.
3.-PASTERURELOSIS Su eficacia es dudosa, aunque hay opiniones diversas al respecto, y probablemente no aportan casi ningún beneficio a un conejo que viva como mascota. Su uso no se aconseja en general para los conejos que viven como mascota.
4.-ENTEROTOXEMIA Su uso no se aconseja en general para los conejos que viven como mascotas.

La incidencia de cada una de ellas varía por zonas y por hábitos del conejo y del dueño.

Por Domingo García. Veterinario JG especialista en pequeños mamíferos.

El texto aquí expresado corresponde a una revisión bibliográfica, a comunicaciones personales de mi actividad clínica y a parte de mi ponencia en el II Congreso JG de julio del 2004 celebrado en el Hospital Veterinario JG de Mutxamel (Alicante-Spain)

Para cualquier comentario o sugerencia no dude en enviarme un e-mail

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