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MEDICINA DE LA RATA Y DEL RATÓN

Por Domingo García. Veterinario JG especialista en pequeños mamíferos.

1.-CLASIFICACIÓN ZOOLÓGICA
Reino: Animal
SubReino: Metazoos
Tipo: Cordados
SubTipo: Vertebrados
Clase: Mamíferos
SubClase: Placentarios
Orden: Rodentia
Suborden: Sciurognathi
Familia: Muridae
Subfamilia: Murinae


Son varias las especies de ratones y ratas que se crían como animales domésticos como:
Mus musculus ratón común
Peromyscus leucopus ratón ciervo
Micromys minutus ratón espiguero
Acomys cahirinus ratón espinoso
Apodemus sylvaticus ratón de campo
Apodemus flavicollis ratón leonado
Lemniscomys barbarus ratón cebra o rayado
Rattus norvegicus rata de laboratorio
Dipodomys desertii rata canguro

2.-MANTENIMIENTO

ALOJAMIENTO
La jaula ha de estar realizada en un material que resista la acción roedora de ratas y ratones. El espacio ideal para mantener 2-3 ratoncitos será de unos 45x30x25cm, así mismo es el espacio mínimo que requiere una rata. Para doblar el número de individuos con un 50% más de jaula es suficiente. Como lecho se puede utilizar virutas de madera (preferentemente de árboles caducifolios, pues las coníferas suelen presentar ácidos grasos volátiles, irritantes para los roedores) que deberemos cambiar cada 2-3 días para evitar en exceso el mal olor (sobretodo ratones). La temperatura ideal de mantenimiento se comprende entre 15-27ºC, por encima de este rango se pueden producir golpes de calor, sobre todo si hay hacinamiento. Si parte de la jaula es de alambre hay que tener en cuenta que son capaces de roerlo por lo que es necesario colocar un calibre adecuado a cada especie y un diámetro de agujero también adecuado.
ALIMENTACIÓN
Se adaptan muy bien a las mezclas comerciales con complementos ocasionales como fruta, algunos granos de pienso para perros, galletas...etc. Hay que evitar sobrealimentar (gran propensión hacia la obesidad) o alimentar mal (dar excesivo pienso de perro) pues es muy fácil caer en la tentación de la solución fácil. Soportan bastante bien los cambios de dieta. El agua deben tenerla a libre disposición bien en cuencos o en bebederos con boquilla de metal.

MANEJO
Los ratones machos no deberían mantenerse juntos puesto que pueden inflingirse serias heridas. Si acaso aquellos que son de una misma camada pudieran estar juntos.
La mayoría de ratones domésticos son dóciles con su manejo, pero ante un entorno desconocido pueden llegar a morder. Para manipularlos en la consulta se puede coger por la cola y levantarlo, acercándolos a una superficie estirarán las patas para agarrarse, momento que se aprovecha con la otra mano para sujetarlos por la piel del cuello e inmovilizarlos. Con las ratas pasa algo parecido, no suelen morder salvo que se estresén, si bien su mordisco es mucho más doloroso. Se recomienda levantarlas colocando una mano alrededor de los hombros. El pulgar se coloca bajo la mandíbula para que la presión impida que el animal muerda. Es importante recordar que no se debe levantar a una rata por la piel del cuello pues podrían ponerse muy nerviosas. En el caso de que ratón o rata se enganchen a la jaula con las uñas hay que llevar cuidado a la hora de separarlos pues es fácil que al estirar les arranquemos una uña.

TÉCNICAS DE INYECCIÓN
Intramusculares: preferible en el cuadriceps con aguja del 25-23G teniendo en cuenta que para un ratón el máximo es 0,05ml y para la rata 0,2ml.
Subcutáneas: pueden administrarse fácilmente en la piel del cuello o tórax hasta 2ml en ratones y 5ml en ratas.
Intraperitoneales: Es imprescindible la ayuda de un ayudante que nos sujete al paciente mientras pinchamos. Hay que extender una extremidad posterior e introducir la aguja de 23 G o inferior a lo largo de la línea de la extremidad hacia el centro del cuadrante posterior del abdomen, de esta manera, se evita la vejiga y el hígado. Si no se dispone de ayuda se puede introducir al paciente en un cono de plástico que le inmovilice.
Intraóseas: a través de la fosa trocantérica del fémur se pueden administrar bolos de fluidoterapia.
Intravenosas: Es muy difícil su punción. Si bien se puede intentar en la vena lateral de la cola mediante aguja de 25 G. Para facilitar la venopunción se recomienda calentar la cola mediante una bombilla de 60 vatios durante 15 minutos, colocarla en una incubadora a 35ºC (¡¡¡cuidado!!!) o tapar la cola bajo un paño caliente. Así en ratas jóvenes y ratones se dilatará la vena lateral de la cola. En ratas viejas la piel gruesa dificultara esta maniobra pero podrían intentarse limpiando bien la piel.
La vena lateral de la cola es la de elección a la hora de una toma de sangre, pues descartamos punción cardiaca, corte de uña por demasiado traumáticas; la punción yugular y femoral por dificultad en su visualización pues quedan bajo mucho tejido graso y piel móvil que dificulta extremadamente su punción; la safena lateral y la cefálica de fácil visualización presentan un calibre excesivamente pequeño para su punción.
Hay que asegurarse una buena anestesia tanto para la inyección intravenosa como para una flebotomía extractiva. SIEMPRE hay que calcular primero el calibre máximo que podemos extraer. En un animal sano e hidratado un 6-10% del peso corporal es el volumen de sangre que alberga y un 10% de ese total es lo que podremos sacar, incluyendo la posible hemorragia. Así para una rata de 200gr presenta 12-20ml de sangre siendo posible extraer 1.2-2ml máximo, sin riesgo. Es decir, un 1% del peso total. Para minimizar la pérdida de sangre se deben usar agujas de insulina pues así la cantidad de sangre que queda en el cono es mínima. Recordar siempre que es mejor heparinizar la aguja para la extracción de sangre. Se debe permitir que la sangre fluya hacia el interior de la jeringa sin tirar del émbolo hasta que la vena haya tenido tiempo de llenarse de nuevo. Aplicar presión en la vena para realizar hemostasia y minimizar la hemorragia interna.
Administración oral: se realiza mediante un catéter pequeño (20G) o en caso de que el producto sea muy apetecible se le puede ofrecer en el extremo de un jeringuilla. También se puede empapar un trozo de pan en él.

3.-FISIOLOGÍA (CONSTANTES Y HEMATOLOGÍA)
rata ratón
esperanza de vida 3-4años 2-3años
peso corporal del adulto 400-800g 20-40g
frecuencia respiratoria 70-150 rpm 100-250 rpm
volumen tidal 1.5-1.8ml 0.15ml
frecuencia cardiaca 260-450 ppm 500-600 ppm
volumen sanguíneo 50ml/kg 80ml/kg
temperatura rectal 38ºC 37.5ºC
valor hematocrito 46% 40%
recuento GR 8.5x1012/L 9.3x1012/L
concentración Hb 14.2g/dl 11.1g/dl
recuento GB 9.8x109/L 13.6x109/L
neutrofilos 25% 17%
linfocitos 74% 72%
ingestión agua/24h 10ml/100g 15ml/100g


La capacidad de adaptación al medio ambiente ha hecho que ratas y ratones tengan un gran éxito evolutivo, pudiendo ocupar nichos ecológicos vetados para otros órdenes animales, uno de estos éxitos es la rata canguro en cuya laringe se realiza el principio de contra reacción física, es decir, al respirar se produce agua que no lanzan al aire de forma inmediata. Debido al continuo intercambio de las dos corrientes de aire, la de salida -formada por el aire húmedo y ya usado por la respiración- y la entrada de aire casi recién aspirado, se produce en la laringe un descenso de la temperatura. La consecuencia de este cambio es que en las regiones mas frías de la nariz, se condensa el 70% del agua producida químicamente en forma de gotas que pueden ser asimiladas por el cuerpo. con mayor contenido de agua o protegerse de la desecación con una efectiva búsqueda de cuevas y madrigueras.

Reanimación en caso de roedores desahuciados por causa desconocida: Se debe administrar una solución electrolítica oral si aún es capaz de deglutir. Calentar los fluidos para administrar SC en caso de que sea capaz de andar. Si presenta una condición corporal muy extrema se debe realiza un tratamiento más intenso mediante la administración de bolos de fluidos intraóseos. Se debe realizar un estudio radiográfico. Aplicar oxigenoterapia en el caso de sospecha de proceso respiratorio (no administrar fluidos orales por peligro de desviación hacia tráquea). El mantenimiento del paciente debe ser en una zona acondicionada con calor y humedad acorde a la especie. No poner bebedero profundos para evitar ahogamientos debido a la debilidad que se le atribuye, una solución es colocar un cuerpo que pese dentro del recipiente que impida que lo vuelque o se cuele. Hay que estar pendientes de si se nutre persé o hay que administrarle alimentación forzada. Realizar por último una exhaustiva exploración cuando hayamos realizado la atención primaria del roedor.





4.-PROCESOS CLÍNICOS

1.-PIEL Y ESTRUCTURAS ANEJAS

1.1.-LESIONES CUTÁNEAS las ratas cuando juegan y se asean se provocan rasguños constantemente que podemos confundir con heridas provocadas por una compañera. Estos rasguños pueden tener su origen en la presencia de ácaros, alergias o dietas con exceso de proteínas (dar pienso de perro o gato exclusivamente). Se relaciona con infecciones bacterianas pero que nunca son la causa primaria. Los ratones son más dados a pelearse infligiéndose pequeñas lesiones con pérdida de pelo y ulceración de la piel. Debido al estrés es posible que se autolesionen produciéndose verdaderas úlceras extensas en el tejido dérmico. Menos graves son las que acontecen por roedura del pelaje en ratones, que afecta principalmente a la zona de los bigotes. Las ratas pelean mucho menos entre ellas y casi nunca llegan a ser lesiones extensas.

1.2.-TIÑA
Normalmente es Microsporumm spp. dando wood positivo. Las lesiones cutáneas causadas por dermatofitos son áreas escamosas con alopecia aunque en ocasiones también aparece eritema y prurito. Griseofulvina a 25mg/kg 30-40d PO. Se ha comprobado que el estrés y una mala alimentación predisponen a sufrir dermatosis, por lo que habría que corregir dichos puntos. Si el prurito es grande se aconseja la aplicación de corticoides como betametasona a dosis de 0,1mg/kg pero teniendo en cuenta la condición sanitaria del paciente pues podría abocarlo a una enfermedad mayor. Trichophyton mentagrophytes puede ser aislado del la mitad de lo ratones pero no ocasionan procesos clínicos.

1.3.-ABSCESOS
Como consecuencia de las peleas pueden llegar a formarse abscesos. Se recomienda la sedación del paciente y la posterior limpieza del absceso, su drenaje y la aplicación tópica de una solución antiséptica y la instauración de una terapia antibiótica vía oral.

1.4.-ECTOPARÁSITOS

SARNA Myobia musculi y Myocoptes musculinus como especies más frecuentes. Radfordia affinis, Psorergates simplex, Otodectes bacoti, Sarcoptes scabiei, Notoedres muris y Trichoecius romboutsi menos frecuentemente. Ocasionan alopecia y prurito. El tratamiento incluye inyecciones de Ivermectina (0,2-0,4mg/kg cada 7-14d) hasta resolución. Hay que desparsitar así a todos los inquilinos que estén en la misma jaula, presenten o no sintomatología y la jaula habrá que acondicionarla de nuevo. Los baños antiparasitarios en ratones no están indicados, debido a que aunque estén muy diluidos son potencialmente tóxicos.
PULGAS las mismas que infectan a perros y gatos.
PIOJOS Polyplax serrata.

1.5.-DERMATITIS ESTAFILOCÓCICAS
No son típicamente pruriginosas pero sí pueden dar lugar a lesiones costrosas de la piel.
1.6.-LINFOMA EPITELIOTRÓFICO
Normalmente ocasionan descamación cutánea, también en algunos casos alopecia y prurito.
1.7.-COLA ANILLADA
Se presentan lesiones y úlceras hemorrágicas en la cola y tejido necrótico intercalado, además de un proceso de descamación generalizado. Algunas zonas se presentan edematosas mientras que otras están muy contraídas (de ahí el apelativo de cola anillada). Distalmente a estas zonas de constricción el tejido es necrótico y no sangra. Es más frecuente desde lactantes hasta ratas jóvenes. Una parte del problema es que hay escasa humedad (<20%, frecuente en habitaciones con calefacción), suelo de malla metálica, cama higroscópica, todo esto unido a escasa regulación térmica de la cola provocan este proceso. El tratamiento dependerá de la gravedad de la patología, será necesario desbridar el tejido necrótico, cambiar vendajes (crema antibiótica tópica) a diario, hidratar la cola y aplicar compresas de agua.


2.-GLÁNDULAS MAMARIAS

2.1.-MASTITIS Son relativamente frecuentes en ratones y ratas, normalmente suele ser eficaz el tratamiento antibiótico sistémico, además es necesario un tratamiento tópico en el caso de ulceraciones locales.

2.2.-TUMORES MAMARIOS En ratones suelen ser malignos, invasivos y difíciles de extraer. Suelen estar asociados a virus. De pronóstico grave, se aconseja eliminarlos quirúrgicamente. Sin embargo en la rata suelen ser fibroadenomas mamarios benignos pero pueden crecer de forma desorbitada complicando su extracción. Aunque es rara la producción de metástasis se aconseja un estudio radiográfico para localizarlas en nódulos linfáticos regionales, vísceras abdominales o pulmones. Se aconseja también la extracción de los nódulos linfáticos regionales para ver si hay metástasis y estudiar el estado en que se encuentra el tumor. La piel que recubre el tumor se intentará conservar por motivos prácticos salvo que se encuentre ulcerada o dañada. El pronóstico es bueno salvo metástasis. Se aconseja la ovriohisterectomía cuando son jóvenes para disminuir la incidencia de tumores mamarios.

3.-ENFERMEDADES GASTROINTESTINALES

3.1.-MALOCLUSIÓN INCISIVOS El crecimiento excesivo de los incisivos ocasiona una inapetencia y pérdida de peso, sin embargo no es normal observar babeo. La dentadura se puede cortar periódicamente pues es normal que esta alteración se repita.

3.2-PROTOZOOS Entamoeba muris, Trichomonas muris y Giardia muris son los más frecuentes en heces pero no se consideran patógenos como tal. Una gran concentración podría provocar una inflamación del intestino pero se puede solucionar con un preparado de metronidazol (2,5mg/ml de agua de bebida) a la que se le añade un 1% de sacarosa para mejorar el sabor.

3.3-COCCIDIOSIS Eimeira spp., es una hallazgo común en ratas y ratones. Es causa secundaria de diarreas o enteritis en animales malnutridos y con mala higiene. Sulfamidas en agua de bebida controlará la infectación 7-10d.

3.4-CESTODOS Y NEMATODOS Hymenolepis sp (cestodo) y Syphacia obvelata y aspiculuris sp. (nematodos) pueden ocasionar diarreas y pérdida de la condición general. Los vermes intestinales se pueden tratar con piperacina (3mg/ml en agua de bebida o 200mg/kg sid 7d, 7d descanso y otros 7d). Los cestodos con niclosamida (100mg/kg PO). Pueden ocasionar prurito localizado en la zona anal.

3.5-SALMONELOSIS Además de diarrea ocasiona una pérdida de la condición general del cuerpo y muertes súbitas. Puede funcionar la neomicina pero se aconseja sacrificio debido a que es una zoonosis importante.

3.6-ENFERMEDAD DE TYZZER causada por Bacillus piliformis produce diarrea junto a un proceso generalizado y muerte. Afecta a muchas especies de roedores (gerbo y hámster) Los individuos afectados mueren en la mayoría de ocasiones. Se puede instaurar un tratamiento a base de tetraciclinas y caolín ( 0,1ml/ratón bid y 1ml/rata bid).

4.-APARATO RESPIRATORIO
La enfermedad respiratoria es el problema de salud más común y causa de muerte en ratas domésticas. El organismo más común que causa esta enfermedad en ratas es la bacteria mycoplasma pulmonis. El mycoplasma es muy contagioso e incurable. Hay diversas expresiones del mycoplasma que son más o menos virulentas así que puede causar más o menos una enfermedad severa. Diversas ratas también parecen tener resistencia a la enfermedad. La severidad de una infección del mycoplasma se puede ver aumentada con el humo del cigarrillo, presencia de virutas de pino o cedro en la cama (que liberan ácidos grasos volátiles irritantes para la mucosa respiratoria, incluso se han relacionado con procesos convulsivos y de daño cerebral a largo plazo), amoníaco de una jaula sucia, exceso de vitamina A o deficiencia de E, y una infección respiratoria simultánea de otro tipo, así como susceptibilidad genética, estrés, hacinamiento, mala nutrición...etc.
Una infección de mycoplasma hace a una rata más susceptible a las infecciones bacterianas respiratorias secundarias también (bordetella bronchiseptica, pasteurella pneumotropica)
Los síntomas respiratorios que son comunes en ratas se pueden causar por la infección primaria del mycoplasma, o las infecciones secundarias, o ambas.
Se han mostrado eficaces altas dosis de tetraciclinas, oxitetraciclinas, tilosina, sulfamidas potenciadas... frente a los agentes causantes de enfermedad respiratoria.

5.-TRASTORNOS NEUROLÓGICOS

5.1.-ENFERMEDAD DEL OÍDO MEDIO E INTERNO muestran sintomatología típica de ladeo de cabeza, giros y pérdida de equilibrio, normalmente por infección con micoplasmas, aunque en ratones es menos frecuente el proceso. Tetraciclinas 100mg/kg sc 7d puede ser eficaz, si no remite la sintomatología se prolongará el tratamiento.

6.-ALTERACIONES DEL COMPORTAMIENTO

6.1.-CANIBALISMO
El canibalismo, en lo que a los roedores se refiere, es un comportamiento desarrollado por los adultos, consistente en devorar o mutilar a sus propias crías. El canibalismo "normal" es aquel por el cual la madre devora aquellas crías que mueren o nacen muertas y obedece a la necesidad de eliminar restos que podrían atraer a diversos predadores y poner en peligro a las crías pues se pudrirían pudiendo provocar enfermedades que acabasen con el resto de la camada. Devorando a las crías muertas se consigue reincorporar parte de la proteína que la madre empleo en el desarrollo de las crías hacia su organismo.
El problema aparece cuando el canibalismo se presenta de una manera “aberrante”, es decir, cuando no esta asociado a ninguna ventaja para la especie, puesto que se mata a animales sanos. Aun así hay comportamientos que aún cuando nos pueden parecer aberrante, tienen en si mismos una causa "justificada". Por ejemplo:
No es infrecuente que las crías que presentan algún tipo de malformación sean devoradas por los padres.
Si no hay suficiente alimento (leche) para todas las crías. La hembra, al ver peligrar a su progenie, decidirá sacrificar a aquellos más débiles. Hay especies que en su medio natural comen de vez en cuando algún que otro insecto. El no suministrar este aporte proteico puede desencadenarlo. Una dieta equilibrada es esencial para evitar problemas. Si aseguramos un aporte suficiente de alimento en cantidad y calidad, en especial en aquellos periodos en los que los animales más lo necesitan (gestación y lactación), quizás luego no tengamos que lamentarnos.
A nadie le interesa que unos genes que no son los suyos propios pasen a la siguiente generación. En colonias se dan casos de camadas muertas por otras parejas, e incluso dentro de la misma camada, por el macho.
Las madres a veces devoran a sus crías cuando se ven sometidas a un fuerte estrés. En estas condiciones la hembra considera que no es viable puesto que la madriguera no es segura. Pero antes de perder la camada la depreda para ayudarse en la formación de la siguiente. Evitar en la medida de lo posible el estrés a los animales, principal causa desencadenante, que tras aparecer puede no retirarse. Hay que proporcionar un lugar tranquilo y adecuado para criar, y molestarlos lo menos posible.
Hay que tener en cuenta que las tendencias caníbales no se dan con la misma frecuencia en todas las especies. Es menos frecuente en jerbos que en hámsteres. Por tanto hay que prestar especial atención a las especies más susceptibles.
Es muy importante retirar cuanto antes las crías muertas del nido.

Hay quien afirma que este comportamiento se debe a una cantidad insuficiente de proteínas en la dieta. Las necesidades para distintos individuos no tienen por qué ser iguales para ambos por lo que es una premisa difícil de demostrar en sí misma.
También los hay que afirman que el canibalismo "aberrante" es debido a causas genéticas. La expresión de un carácter, en este caso el canibalismo, se debería a una combinación de causas genéticas y ambientales, animales "portadores" de canibalismo pueden no desarrollarlo puesto que las condiciones ambientales inhiben la expresión de este carácter, mientras que animales no portadores, por las condiciones ambientales pueden desarrollar canibalismo.
Otra teoría dice que el consumo de proteína animal extraña a su dieta (carne) por parte de los roedores, puede desarrollar en estos un gusto hacia la carne que predisponga a los animales hacia el canibalismo.
Finalmente, cabe mencionar que lo que inicialmente fue un comportamiento "justificado", puede continuarse una vez desaparecida la causa y pasar a ser aberrante. Hay que tener en cuenta que una vez que el canibalismo aberrante aparece es casi imposible conseguir que cese este comportamiento, por lo tanto lo mejor es la prevención.



6.2.-ALOPECIA PSICÓGENA:
La alopecia psicógena es un comportamiento donde la rata se acicala obsesivamente. El resultado es zonas sin pelos o las áreas donde el pelo parece tener un mal corte de pelo. Generalmente no hay daños a la piel. Las áreas más comunes son las piernas y el vientre.

7.-OFTALMOLOGÍA

7.1.-INFLAMACIÓN DE LA GLÁNDULA DE HARDER: Se puede producir por varias etiologías, si bien la vírica es la más común. Infecciones bacterianas pueden también hacer mella en esta glándula sobre todo secundariamente a procesos oculonasales y respiratorios. El signo más característico de su clínica es la porfiria, se producen lágrimas pigmentadas de rojo-anaranjado, lo que deja el ojo húmedo y con dicha coloración perceptible sobre todo en animales albinos. Los pigmentos porfirínicos son irritantes y el individuo afectado es posible que se autolesione y aumente la irritación, por lo que se aconseja el lavado del ojo con SSF de forma terapéutica. Los proceso víricos suelen ser autolimitantes (salvo que estén complicados con procesos respiratorios), los bacterianos habrá que tratarlos correspondientemente y eliminar agentes irritantes de la glándula como las virutas de coníferas y tomar medidas higiénico sanitarias.


5.-DETERMINACIÓN DEL SEXO (CARACTERÍSTICAS SEXUALES)

DETERMINACIÓN DEL SEXO EN RATONES

La determinación del sexo en animales recién nacidos o muy jóvenes es difícil. La distancia ano-genital es el doble en machos que en hembras, siendo siempre preferible disponer de individuos de ambos sexos para facilitar la distinción.

DETERMINACIÓN DEL SEXO EN RATAS

Resulta más sencillo pues los testículos son visibles incluso en animales jóvenes. De estar en canal inguinal y no apreciarse se procede a sujetar a la rata en posición vertical para que desciendan los testículos hasta el escroto. Al igual que en otras especies la distancia ano-genital es el doble en machos que en hembras.

CARACTERÍSTICAS SEXUALES EN RATONES Y RATAS

RATA RATON
MADUREZ SEXUAL 8-10 sem 6-7 sem
ESTRO 4-5 d 4-5 d
DURACIÓN DEL CELO 14 h 14 h
PERÍODO DE GESTACIÓN 20-22 d 19-21 d
TAMAÑO DE LA CAMADA 6-16 (media 10) 8-12 (media 10)
EDAD DEL DESTETE 3-4 sem 3-4 sem

Las ratas y los ratones son poliéstricos sin temporada específica de cría. Tras la cópula se forma un tapón vaginal que en las ratas dura unas doce horas y en ratones hasta dos días. La gestación se puede diagnosticar mediante palpación en el último tercio. El desarrollo mamario se hace evidente a partir del día 15 de preñez y días antes del parto comienza a construir nido acumulando grandes cantidades de materiales. Después del parto es conveniente dejar tranquila a la hembra para evitar problemas de canibalismo. Las crías son muy inmaduras pero crecen rápidamente pudiendo realizarse el destete a la tercera semana post partum. Existe celo post partum a las doce horas del parto y es viable, por lo que se recomienda separar a la hembra del macho para evitar superpoblación. Al ser animales sociables se recomienda hacer grupos por sexos si no se quiere que críen.

6.-RECOMENDACIONES QUIRÚRGICAS Y ANESTESIA
Para la correcta administración de anestesia inhalatoria (de elección), hay que tener en cuenta el flujo de gases. El volumen tidal de un ratón (p.ej: 30g) será de 0,3-0,5ml, por lo que para evitar la reinhalación de los gases expirados utilizaremos un flujo tres veces el volumen minuto del ratón. Si la frecuencia respiratoria en un ratón anestesiado es de 80-120 rpm el flujo será de: (0,3)x(80)x(3)=72ml/min /(0,5)x(120)x(3)=180ml/min. No se recomienda el uso de anestésicos inyectables.

OVARIECTOMÍA mediante abordaje transverso dorsal. Como en todos los pequeños roedores se puede realizar un abordaje lumbar sin retirar el útero. Se coloca al animal en decúbito ventral. Se realiza una incisión en línea media dorsal o transversa en cada lado de la línea media dorsal. A través de la incisión cutánea, realice una disección caudal a la última costilla aproximadamente a nivel de la tercera vértebra lumbar, atravesando la pared muscular hacia cavidad peritoneal. Se extrae el ovario, cercano a la grasa caudal del riñón. No es necesaria ligadura pues la hemorragia es mínima, hacer hemostasia si es necesario. Con sutura absorbible 5-0 o 6-0 sintética se cierra musculatura piel con puntos subcuticulares.

7.-USO DE FÁRMACOS
sulfameracina 0,02% en agua de bebida
sulfadimidina 0,2% en agua de bebida
tetraciclina oral 5mg/ml en agua de bebida
tetraciclina sc 100mg/kg
oxitetraciclina larga acción 60mg/kg sc,im cada 3d
cefalexina 60mg/kg PO
30mg/kg sc ratón
15mg/kg sc rata
cefaloridina 30mg/kg im sid
cloranfenicol im 50mg/kg im bid ratón
10mg/kg im bid rata
cloranfenicol PO 200mg/kg tid ratón
20-50mg/kg bid rata
ampicilina inyección 15% 50-150 mg/kg sc
ampicilina PO 200mg/kg
amoxicilina 150mg/kg im rata
100mg/kg sc ratón
neomicina 50mg/kg sc rata
2,5g/l en agua potable ratón
2 g/l en agua potable rata
amoxicilina+clavulanato 2ml/kg PO
(SYNULOX)
trimetoprim-sulfadiacina 24% 5ml/kg PO
tilosina 10mg/kg sc

estreptomicina toxica
icapenicilina procaína toxica

Por Domingo García. Veterinario JG especialista en pequeños mamíferos.

El texto aquí expresado corresponde a una revisión bibliográfica y a parte de mi ponencia en el II Congreso JG de julio del 2004 celebrado en el Hospital Veterinario JG de Mutxamel (Alicante-Spain)

Para cualquier comentario o sugerencia no dude en enviarme un e-mail

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